(1)取材要注意新鮮和保鮮 新鮮組織易于培養成功，取材時(shí)應盡量在4~6h內能制作成細胞，盡快入箱培養，若不能即時(shí)培養，應將組織浸泡于培養液內，于4℃存放。若組織塊較大，應在清除表面壞死組織、脂肪和結締組織后，切碎于培養液內4℃存放，但時(shí)間不能超過(guò)24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應加入含10%二甲基亞砜的培養基，按細胞凍存方式于液氮中冷凍保存。
 

　　(2)取材應嚴格無(wú)菌 所取標本材料應在無(wú)菌條件下進(jìn)行，為了確保無(wú)菌，對所取材料若疑有污染的可能，應將所取組織在含高濃度抗菌素(400單位/mL)甚加入適量的兩性霉素B或10%達克寧液的培養液內于4℃下存放2小時(shí)以上，再用PBS洗2~3次，以確保所取材料無(wú)菌。要用無(wú)菌包裝的器皿或事先消毒好的帶少許培養液(內含400單位/mL抗菌素)的小瓶等便于攜帶的物品來(lái)取材，所取材料應避免接觸有毒有害的化學(xué)物質(zhì)，如碘、汞等。
 

　　(3)取材和原代細胞制作時(shí)，要用鋒利的器械，如手術(shù)刀或剃須刀片切碎組織，盡可能減少對細胞的機械損傷。
 

　　(4)要仔細去除所取材料上的血液、脂肪、壞死組織及結締組織，切碎組織時(shí)應避免組織干燥，可在含少量培養液的器皿中進(jìn)行。
 

　　(5)取材應注意組織類(lèi)型、分化程度、年齡等，一般來(lái)講，胚胎組織較成熟個(gè)體組織容易培養，分化低的較分化高的組織容易生長(cháng)，腫瘤組織較正常組織容易培養。取材時(shí)應盡量選用易培養的組織進(jìn)行培養。
 

　　(6)原代細胞取材時(shí)要同時(shí)留好組織學(xué)標本和電鏡標本。對組織的來(lái)源、部位、包括供體的一般情況要做詳細的記錄，以備以后查詢(xún)。